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3. Cultures de fibroblastes  80

    • Culture 80


    • Analyse du temps de doublement des fibroblastes 81


4. Mesure de l'activité PIP2 5-phosphatase 81

  • Préparation de l'extrait cellulaire 81

  • Préparation du phosphatidyl-inositol-(4,5)-diphosphate tritié 82

  • Dosage 82

5. Production d'anticorps dirigés contre la protéine OCRL1 83


  • Anticorps anti N et C terminaux de la protéine OCRL1 83

  • Production du vecteur d'expression 83

  • Construction du vecteur d'expression 83

  • Transformation bactérienne 84

  • Minipréparation d'ADN plasmidique 84

  • Maxipréparation d'ADN plasmidique 85

  • Expression des fragments N et C terminaux de la protéine OCRL1 86

  • Anticorps antipeptide dirigé contre l'extrémité C terminale 86

  • Production 86

  • Contrôle par Western Blot 87

  • Purification des anticorps 87


6. Analyse de la protéine OCRL1 par Western Blot 89

  • Préparation des échantillons 89

  • Western blot 89



III. RESULTATS ET DISCUSSION-----------------------------------92

A. Etudes moléculaires et génétiques 92

1. Nomenclature : état des lieux et correctifs 92
2. Identification de mutations chez les patients atteints de Syndrome de

Lowe 93

  • Type de mutation 97

  • Fréquence des mutations 98

  • Distribution des mutations 99

  • Dépistage des conductrices 101

  • Mutations de novo 101

  • Absence d'identification de mutation 102

  • Bilan de détection 103


3. Description et discussion des mutations chez les patients atteints de Syndrome de Lowe 103

  • Délétions en phase 103

  • Mutations faux sens 104

  • Mutations affectant un site d'épissage 110

  • Mutations situées au niveau du site donneur d’épissage 110

  • Mutations situées au niveau du site accepteur d’épissage 114

  • Mutations aux bornes de l'exon 116

  • Mutations introniques 118

  • Délétions génomiques 120

  • Mutations non sens et mutations responsables d'un décalage du cadre de

lecture 124

4. Identification et description des mutations chez les patients atteints de maladie de Dent 125

  • Mutations faux sens 127

  • Mutation d'épissage 128

  • Délétion génomique 129


5. Haplotypage et mosaïques germinales 131
B. Corrélation génotype-phénotype 138

1. Corrélation génotype-phénotype clinique 138
2. Analyse du morphotype des fibroblastes mutés – temps de doublement 146
3. Mesure de l'activité PIP2 5-phosphatase des fibroblastes mutés 149
4. Analyse par Western blot de la protéine OCRL1 154
5. Analyse des transcrits d'OCRL1 159

6. Continuum syndrome de Lowe – maladie de Dent 165
IV. CONCLUSION-------------------------------------------------------167

V. BIBLIOGRAPHIE----------------------------------------------------174

VI. ANNEXE---------------------------------------------------------------186

SOMMAIRE DES FIGURES ET TABLEAUX



FIGURES
Figure 1 : Représentation schématique du gène OCRL1…………………………………….17

Figure 2 : Séquence des exons du gène OCRL1 et leurs bornes introniques………………...20

Figure 3 : Séquence de l'ADNc d'OCRL1……………………………………………………22

Figure 4 : Séquence de la protéine OCRL1…………………………………….……………23

Figure 5 : Modèle du site 5-phosphatase d'OCRL1………………………………………….24

Figure 6 : Représentation schématique de différentes 5-phosphatases………………………25

Figure 7 : Métabolisme partiel des phosphatidylinositol phosphates………………………..26

Figure 8 : Les différents domaines de la protéine OCRL1…………………………………..27

Figure 9 : Différents domaines d'OCRL1 et leurs interactions protéiques…………………..31

Figure 10 : Schéma d'un phosphoinositide…………………………………………………..33

Figure 11 : Localisation intracellulaire des 5-phosphatases…………………………………41

Figure 12 : Dendrogramme de la superfamille des petites protéines G……………………...43

Figure 13 : Le cycle des GTPases…………………………………………………………....45

Figure 14 : Photographie de deux enfants atteints de syndrome de Lowe…………………...55

Figure 15 : Autoradiographie d'un gel de SSCA……………………………………………..74

Figure 16 : Profil chromatographique de l'exon 12…………………………………………..75

Figure 17 : Purification du peptide recombinant Nter………………………………...……..88

Figure 18 : Caractérisation des peptides recombinants N et C terminaux de la protéine OCRL1………………………………………………………………………………………..88

Figure 19 : Corrections de la localisation du début de la partie codante du gène OCRL1…..92

Figure 20 : Distribution des mutations par type……………………………………………...98

Figure 21 : Distribution des mutations identifiées dans notre étude et la base de données...100

Figure 22 : Répartition des mutations faux sens sur le gène OCRL1……………….………105

Figure 23 : Blocs de séquences d'acides aminés hautement conservés partagés par 5 phosphoinositide et inositol polyphosphate 5-phosphatases humaines……………………..107

Figure 24 : Alignement du domaine Rho-GAP d'OCRL1 avec 5 autres protéines de la

famille Rho-GAP……………………………………………………………………………109

Figure 25 : Conséquence de la mutation c.1551+1G>A…………………………………....111

Figure 26 : Conséquence de la mutation c.2530+1G>C……………………………………112

Figure 27 : Conséquences protéiques de la mutation c.2418+2T>G……………………….113

Figure 28 : Conséquences attendues des mutations affectant le site accepteur consensuel d'épissage……………………………………………………………………………………115

Figure 29 : Conséquences attendues des mutations aux bornes de l'exon………………….117

Figure 30 : Analyse par RT-PCR de la mutation c.1415G>A……………………………...118

Figure 31 : Conséquence protéique de la mutation c.889-11G>A………………………….119

Figure 32 : Conséquence protéique de la mutation c.1828+5G>A…………………………119

Figure 33 : Conséquence protéique attendue de la mutation c.1416-3C>G………………..120

Figure 34 : Caractéristique de la délétion des exons 5 à 8………………………………….122

Figure 35 : Délétion des exons 8 à 12………………………………………………………122

Figure 36 : Caractéristiques du fragment de jonction de la délétion des exons 6 à 12……..123

Figure 37 : Conséquence de la mutation p.Asn857AsnfsX34……………………………...124

Figure 38 : A. Distribution et nature des mutations identifiées dans notre étude…………..125

Figure 39 : Blocs de séquences d'acides aminés hautement conservés partagés par 5 phosphoinositide et inositol polyphosphate 5-phosphatases humaines…………….……….128

Figure 40 : Mutation d'épissage au sein de l'intron 1……………………………………….130

Figure 41 : Ségrégation de la mutation p.Arg483Gly et des marqueurs du chromosome

X dans la famille n° 1………………………………………………………………………..133

Figure 42 : Ségrégation de la mutation c.1415G>A et des marqueurs du chromosome

X dans la famille n° 2……………………………………………………………………….135

Figure 43 : Ségrégation de la mutation p.Arg646Stop et des marqueurs du chromosome

X dans la famille n° 3………………………………………………………………………..137

Figure 44 : Questionnaire clinique sur le syndrome de Lowe……………………………...140

Figure 45 : Culture de fibroblastes……………………………………………….…………146

Figure 46 : Analyse du temps de doublement de fibroblastes normaux et mutés…………..147

Figure 47 : Autoradiographie de la plaque de chromatographie……………………………149

Figure 48 : Représentation schématique des résultats du dosage de l'activité PIP2 5-phosphatase d'OCRL1……………………………………………………………………….150

Figure 49 : Analyse par Western blot de la protéine OCRL1………………………………156

Figure 50 : Analyse par PCR quantitative des transcrits d'OCRL1…………………………161

Figure 51 : Analyse par PCR quantitative des transcrits de GAPDH……………………....162

Figure 52 : Représentations graphiques des quantités d'ARNm d'OCRL1 par rapport aux quantités d'ARNm de GAPDH………………………………………………………………163

Figure 53 : Représentations graphiques, en fonction du type de mutation, des quantités d'ARNm d'OCRL1 par rapport aux quantités d'ARNm de GAPDH et inversement………...164
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